疾病监测  2018, Vol. 33 Issue (6): 457-462

扩展功能

文章信息

王宇萌, 梁莹, 张恩民, 马娜, 申小娜, 蔡虹, 张志凯, 夏连续, 梁未丽, 代瑞霞, 李伟
Wang Yumeng, Liang Ying, Zhang Enmin, Ma Na, Shen Xiaona, Cai Hong, Zhang Zhikai, Xia Lianxu, Liang Weili, Dai Ruixia, Li Wei
青藏高原喜马拉雅旱獭鼠疫疫源地鼠疫耶尔森菌遗传特征分析
Genetic analysis of Yersinia pestis strains isolated from Marmota himalayana plague focus of Qinghai-Tibet Plateau
疾病监测, 2018, 33(6): 457-462
Disease Surveillance, 2018, 33(6): 457-462
10.3784/j.issn.1003-9961.2018.06.005

文章历史

收稿日期:2018-02-13
青藏高原喜马拉雅旱獭鼠疫疫源地鼠疫耶尔森菌遗传特征分析
王宇萌1, 梁莹1, 张恩民1, 马娜1, 申小娜1, 蔡虹1, 张志凯1, 夏连续1, 梁未丽1, 代瑞霞2, 李伟1     
1. 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所, 传染病预防控制国家重点实验室, 北京 102206;
2. 青海省地方病预防控制所, 青海 西宁 811602
摘要目的 研究青藏高原喜马拉雅鼠疫疫源地那曲和比如地区鼠疫耶尔森菌(鼠疫菌)菌株的分子分型特征,确定具有该分型特征的鼠疫菌在青藏高原鼠疫疫源地的分布情况。方法 应用板块重排、差异区段分析、间区规律短回文重复、多位点可变数目串联重复序列分析方法对分离自青藏高原地区、四川省、云南省的98株鼠疫菌进行分析。结果 那曲和比如地区的鼠疫菌菌株中第57~60板块的排列方式与测序菌株Z176003一致,在其他实验菌株中未发现该重排特征。结论 分离自那曲和比如的鼠疫菌菌株具有独特的分子分型特征,该特征在本地区的菌株中普遍存在,且菌株多态性持续分化。
关键词鼠疫耶尔森菌    遗传特征分析    青藏高原    那曲地区    
Genetic analysis of Yersinia pestis strains isolated from Marmota himalayana plague focus of Qinghai-Tibet Plateau
Wang Yumeng1, Liang Ying1, Zhang Enmin1, Ma Na1, Shen Xiaona1, Cai Hong1, Zhang Zhikai1, Xia Lianxu1, Liang Weili1, Dai Ruixia2, Li Wei1     
1. State Key Laboratory of Communicable Disease Prevention and Control, National Institute for Communicable Disease Control and Prevention, Chinese Center for Disease Control and Prevention, Beijing 102206, China;
2. Qinghai Endemic Disease Control Institute, Xining 811602, Qinghai, China
This study were supported by the National Key Foundation for Exploring Scientific Instrument(No. 2012YQ09019706) and National Natural Science Foundation(No. 81660349)
Corresponding author: Dai Ruixia, Email:drx200907@163.com; Li Wei, Email:liwei@icdc.cn.
Abstract: Objective Identify the characteristics of genomovar of Yersinia pestis (Y. pestis)isolated from Naqu and Biru county in Tibet Autonomous Reagion and study the distribution of isolates with same genomovars characteristics in Qinghai-Tibet Plateau, including Tibet and Gansu, Sichuan, Yunnan provinces. Methods Analysis the molecular subtypes of 98 Y. pestis strains isolated in the plague focus of Qinghai-Tibet Plateau by 4 PCR-basic molecular subtyping methods, i.e., Plate tectonics rearrangements, Different region (DFR), Clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), Multiple-Locus Variable-Number Tandem Repeat Analysis (MLVA). Results The rearrangement pattern of No.57-60 plate tectonics are the same in all Y. pestis strains isolated from Naqu and Biru county, just as the strains Z176003 (isolated in Naqu county and whole genomy was sequenced). No same genomy characterisctics were found in other strians from other regions in Qinghai-Tibet Plateau. Conclusion Strains isolated from Naqu and Biru county has its own characteristics of genome rearrangement and exclustive profiles of DRF and CRISPR. There were is a few different in VNTR loci of MLVA subtyping methods.
Key words: Yersinia pestis     Genetic analysis     Qinghai-Tibet plateau     Naqu region    

鼠疫是由鼠疫耶尔森菌(Yersinia pestis,鼠疫菌)引起的一类人兽共患自然疫源性疾病,历史上数次大流行将鼠疫菌传播到世界各地,给人类社会带来巨大灾难[1]。我国鼠疫自然疫源地面积广阔,类型多样,分布在至少全国19个省份的305个县(市、旗)[2]。目前,青藏高原已发现两种类型鼠疫自然疫源地,即1954年发现的喜马拉雅旱獭鼠疫自然疫源地和1997年发现的青海田鼠鼠疫自然疫源地[3-5]。其中,喜马拉雅旱獭鼠疫自然疫源地分布在青海、西藏、甘肃、新疆维吾尔自治区(新疆)地区的75个县(市)。青海田鼠鼠疫自然疫源地分布在四川省石渠县和青海省称多县。

目前,大多鼠疫菌基因组已经测序完成,其中包括1株分离自青藏高原那曲地区的喜马拉雅旱獭疫源地菌株Z176003 [6],既往Shen等[6]研究将世界范围内8株已测序的鼠疫菌进行比对,将鼠疫菌的基因组划分成61个板块,并用61个板块缺失和排列的特征对鼠疫菌进行分型发现,菌株Z176003缺失了一段独特的序列。利用BLAST软件将Z176003菌株与61个板块比对发现,Z176003缺失序列即编号第59号板块,且发现在该菌株中第58号板块发生了位移,致使在该菌株中第57板块与第60板块直接相连[7]。为确定该缺失是否为那曲、比如地区鼠疫菌的共同特有特征,本研究采用了板块重排、差异区段分析(different region,DFR)、间区规律短回文重复(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)、多位点可变数目串联重复序列分析(multiple - locus variable - number tandem repeat analysis,MLVA)4种基于PCR技术的分子分型方法对所有分离自那曲、比如地区的青藏高原喜马拉雅旱獭鼠疫疫源地菌株,以及一些分离自青藏高原和四川省、云南省鼠疫自然疫源地的98株鼠疫菌进行基因组分型研究和比较,确定该类型菌株在我国的地理分布。

1 材料与方法 1.1 菌株来源

选取1954-2012年分离自青藏高原地区的98株鼠疫菌代表菌株,其中76株菌分离自喜马拉雅旱獭鼠疫自然疫源地,19株鼠疫菌分离自青海田鼠鼠疫自然疫源地,3株分离自云南省剑川和玉龙鼠疫疫源地。菌株分离地见图 1

图 1 98株鼠疫菌的地理分布 Figure 1 Geographic distribution of 98 Y. pestis strains
1.2 方法

采用以PCR技术和序列测定为核心的板块重排、CRISPR、DFR、MLVA 4种鼠疫菌型别鉴定方法。在Z176003全基因组序列的基础上利用Primer 5.0软件对第57、58、59、60板块的连接部位进行引物设计,并用已测序菌株验证引物。重排研究引物信息见表 1。CRISPR、DFR、MLVA引物序列依次参照文献[8-10],由北京天一辉远生物科技有限公司合成。

表 1 重排研究引物信息 Table 1 Information of plate tectonics rearrangements primers
板块重排分型 在CO92序列中的位置 引物序列(5′~3′) 产物长度(kbp) 退火温度(℃)
A MF 4417256~4417280 ATTT GAG CAG CGA GTG AAG CCA GAC 2 63
MR 4419215~4419194 TGA ACA GCC GAT TGA CGC CAG A
B MF 4519897~4519920 ACA TCG TGC CGT GTA TGC TCC TCA 2 63
MR 4522022~4521998 CGT GGC TTG CTA CTT TCA CTG TTG G
C MF 4564017~4564038 TCC GAT GAA CCA ACC GCC AAT G 2 63
MR 4565772~4565751 TGA GCC ACC GAG TGA TGC CAG A
D MF 4417258~4417280 TTG AGC AGC GAG TGA AGC CAG AC 2 63
MR 4565772~4565751 TGA GCC ACC GAG TGA TGC CAG A
1.3 聚类分析

利用BioNumerics V5.10软件,采用效用均等的分类资料分析方法(Unweighted Pair Group Method with Arithmeticmeans,UPGMA)对数据进行分析。应用MLVA(14+12)方法的26个指标聚类时,为加强该分级分型法中14个低变异度指标在鼠疫种群中的区分能力,减弱高变异度的12个指标对聚类关系的影响,将第一级分型14个指标的权重设为2,用于种内溯源分析的12个指标权重设为1。

2 结果 2.1 板块重排和DFR分型实验结果

1976-2012年分离自西藏自治区(西藏)那曲和比如地区的9株鼠疫菌(包括所有收集菌株)的扩增结果全部与测序菌株Z176003一致,表明第57与60板块相连,该特殊排列模式在那曲和比如地区的菌株中比较普遍。而分离自其他地区的鼠疫菌未发现与Z176003菌株一致的扩增结果,说明该板块排列模式为那曲和比如地区菌株所特有的排列模式,见表 2

表 2 板块重排实验结果 Table 2 Results of plate tectonics rearrangements
菌株分离地点 板块重排分型 菌株数
A B C D
西藏那曲、比如(含Z176003) - - - + 9
其他地区(含D182038、D106004[6] + + + - 89
2.2 DFR、CRISPR、MLVA结果

98株菌应用MLVA(14+12)方法的26个指标聚类,为区分该策略中14个低变异度指标在鼠疫种群中的区分能力,这14个指标权重设为2,另外12个指标权重设为1。聚类结果显示,98株实验菌株在基因型上被分为4大类,对比菌株的分离地点发现,4类基因型分别分布在青藏高原的冈底斯山一带、祁连山一带、那曲地区、称多和石渠地区,为4个青藏高原田鼠鼠疫疫源地的亚型。在实验中,那曲和比如地区的菌株前14个数目可变串联重复序列(variable number of tandem repeats,VNTR)位点的重复数相同且与Li等[10]实验结果一致,在后12个VNTR位点中,M22、M34、N1606、N2117位点的重复数发生了变化,减少或增加了1~5个重复数不等,说明菌株在传入那曲和比如地区后持续进化,VNTR位点在不断突变。

DFR方法与板块重组相似,利用23对引物对菌株进行分型,将98株菌分为9种型别,其中那曲和比如地区的菌株被分为单独一类,即G06型别。其他实验菌株分别为G05、G07、G08、G10、G14等多种型别[11]。G14型主要分布在称多和石渠的田鼠鼠疫疫源地,G10型主要分布在冈底斯山型疫源地,G08型分布在祁连山型鼠疫疫源地,G07和G05型分布在祁连山和巴颜喀拉山一带的鼠疫疫源县。将DFR实验阴性结果的扩增片段与板块排列中缺失的第59板块的序列进行了比对显示,DFR14和DFR22扩增的产物与第59板块有重合。

CRISPR序列在98株实验菌株中对应YPa、YPb和YPc,有9种排列(型别),见图 2。其中,那曲和比如地区的CRISPR排列为在3个位点排列依次为a1- a2-a3-a4-a5-a6-a7、b1-b2-b3-b4、c1-c2-c3。与包括青海省的10株、四川省的4株、云南省的1株、西藏的5株鼠疫菌的CRISPR类别一致,CRISPR方法不能区分那曲地区菌株。

图 2 98株菌MLVA(14+12)聚类结果 Figure 2 Phylogenetic tree of 98 Y. pestis strains by MLVA(14+12) 注:DFR和CRISPR的实验结果作为菌株信息呈现在图中
3 讨论

随着基因组学技术的发展,多种分析技术被应用于鼠疫菌的分析研究,各技术均有其优势和缺点[12]。鼠疫菌的染色体和质粒中存在大量掺入序列(IS),如IS100、IS1661、IS1541、IS285。这些插入序列占整个鼠疫基因组的3.7%(以CO92为例)。使鼠疫菌染色体DNA具有高度的可塑性,重组、片段获得和缺失、基因失活等现象普遍。板块重排指鼠疫菌染色体中DNA区段的排列顺序和方向发生变异,导致不同区段中所载荷基因的位置、功能及相互关系的变化[13]。鼠疫菌染色体的61个板块相对独立,板块内部基因排列十分稳定,而板块间的相对位置在不同菌株的染色体上各不相同[7]。这些特征可被用于鼠疫菌的种群结构研究。DFR为细菌基因组在进化过程中表现出存在或缺失的片段,这种存在或缺失反映出鼠疫菌在进化过程中横向基因的转移情况。鼠疫菌基因组包含23个差异片段,基于此基因组型的分布具有明显的疫源地特异性,多数疫源地拥有占优势数量的基因组型,可用于鼠疫菌种群关系和微进化分析,反映鼠疫菌在自然界适应性进化及其与生态适应的关系[9, 11, 14]。这两种分型方法实际说明的是一类性质的问题,即由插入序列引起的DNA大片段的缺失和重排。既往单核苷酸的多态性(SNP)研究认为那曲和比如地区的菌株型属于古典型鼠疫菌1.IN群[15]。本研究那曲和比如菌株缺失的第59板块位于CO92全基因组序列4565718~4610718位置,全长45 001 bp,上游插入序列和下游插入序列均为IS1661。可能是导致板块消失的原因之一。59板块内包含33个基因,其基因产物有二元调控系统、氨基酸酶、调控蛋白、膜蛋白、糖转运蛋白、离子转运系统、菌毛蛋白和木酮糖激酶等[16]

DFR方法用23个差异片段可以很好地区分鼠疫菌的多种基因型别,在灵活度、精确度上优于板块重排方法,但板块重排可能通过更少的扩增来判定基因型别,其应用需进一步研究。

CRISPR为一类有同向重复序列(direct repeat,DR)和将其分隔开的间区序列(spacer)构成的重复序列,广泛分布于原核生物基因组中。CRISPR位点可作为细菌分型和进化分析的理想分子靶标[17]。鼠疫菌基因组中存在3个CRISPR位点,CRISPR位点的spaces分布可用于鼠疫菌的分型研究[8, 17],该方法操作简单快速、结果稳定、重现性好。本研究CRISPR方法将98株菌分为9种类型,来自于四川石渠和青海称多的青海田鼠型菌株单独为一个型别,但那曲和比如地区菌株的间区序列的分布未能与其他同西藏同群的36株菌区分,该方法对于菌株的分辨力不如DFR法。

MLVA通过区分基因组上多个具有多态性的VNTR的重复数来区分不同菌株。国内杨瑞馥[12]团队发展的MLVA(14+12)测序利用两组VNTR的组合,即利用14个变异度低的指标组合(MLVA14)对鼠疫种群进行划分,其分类效果类同于基因组SNP分型方法,另增加12个高变异度的VNTR指标(MLVA12)可用于鼠疫菌的溯源调查,因简便快捷,适合鼠疫监测实验室开展溯源调查。本研究中,该方法将实验菌株分为4大类,与菌株的地理分布一致,即冈底斯山型、青海田鼠型、祁连山型和那曲比如型。在每类中,菌株又分为许多亚种,该分型方法非常精准,其结果可用于观察同类别菌株的细微遗传进化差别。那曲和比如等多地菌株均有再进化现象,呈现遗传多态性。

就那曲和比如地区的菌株而言,有其独特的基因型别,可能归因于该疫源地菌株的特殊地理占位,该地区地处念青唐古拉山脉与唐古拉山脉交汇处,高山阻断使该地区的菌株在一次偶然传入后,经过自然选择,形成了适应该地区的基因型别,该型别很难输出,也很难有外来菌株再次偶然传入,久而久之其地理局限性导致该地区菌株特有的基因型稳定遗传,并保守在地区内,可见地理特征对菌株的基因型分布有一定的划分和阻断作用,更多基因型与地理特征关系需更多研究验证。

志谢: 中国科学院地理和自然资源研究所陈奕先提供青藏高原地形图,并取得版权同意;云南省地方病防治所王鹏、四川和西藏疾病预防控制中心鼠鼠疫防治工作技术人员提供菌株,在此感谢!

作者贡献:

王宇萌  ORCID:0000-0002-2651-665x

王宇萌:实验操作,数据分析,文章撰写

梁莹、张恩民、马娜、申小娜、蔡虹、张志凯:实验操作与数据分析技术指导

夏连续、梁未丽:论文写作指导

代瑞霞、李伟:课题经费资助

参考文献
[1]
卫生部卫生应急办公室, 中国疾病预防控制中心. 鼠疫防控应急手册[M]. 北京: 北京大学医学出版社, 2009: 1-2.
Ministry of Health Emergency Response Office, China Center for Disease Control and Prevention. Emergency handbook for plague prevention and control[M]. Beijing: Peking University Medical Press, 2009: 1-2.
[2]
张贵军, 段天一, 邵奎东, 等. 全国2015年鼠疫监测结果[J]. 中国地方病防治杂志, 2016, 31(增刊1): 1-7.
Zhang GJ, Duan TY, Shao KD, et al. National plague surveillance results 2015[J]. Chin J Endem Dis Prev, 2016, 31(Suppl 1): 1-7.
[3]
方喜业. 中国鼠疫自然疫源地[M]. 北京: 人民卫生出版社, 1990: 1-291.
Fang XY. China's plague natural foci[M]. Beijing: People's Medical Publishing House, 1990: 1-291.
[4]
刘振才, 海荣, 李富忠, 等. 青藏高原青海田鼠鼠疫自然疫源地的发现与研究[J]. 中国地方病防治杂志, 2001, 16(6): 321-327.
Liu ZC, Hai R, Li FZ, et al. The discovery and study of Microtus fuscus nature plague foci in Qinghai-Tibet Plateau[J]. Chin J Endem Dis Control, 2001, 16(6): 321-327. DOI:10.3969/j.issn.1001-1889.2001.06.001
[5]
王祖郧, 罗松达卫, 于晓涛, 等. 青海省青海田鼠鼠疫自然疫源地的发现与研究[J]. 中国地方病防治杂志, 2004, 23(1): 69-72.
Wang ZY, Luo SDW, Yu XT, et al. The discovery and research of Microtus fuscus plague natural foci in Qinghai province[J]. Chin J Endemiol, 2004, 23(1): 69-72. DOI:10.3760/cma.j.issn.1000-4955.2004.01.024.issn.1000-4955.2004.01.024
[6]
Shen XN, Wang Q, Xia LX, et al. Complete genome sequences of Yersinia pestis from natural foci in China[J]. J Bacteriol, 2010, 192(13): 3551-3552. DOI:10.1128/JB.00340-10
[7]
Liang Y, Hou XX, Wang YH, et al. Genome rearrangements of completely sequenced strains of Yersinia pestis[J]. J Clin Microbiol, 2010, 48(5): 1619-1623. DOI:10.1128/JCM.01473-09
[8]
Cui YJ, Li YJ, Gorgé O, et al. Insight into microevolution of Yersinia pestis by clustered regularly interspaced short palindromic repeats[J]. PLoS One, 2008, 3(7): e2652. DOI:10.1371/journal.pone.0002652
[9]
杨晓艳, 魏柏青, 靳娟, 等. 中国鼠疫耶尔森菌差异区段分型及其地理分布特征[J]. 中华流行病学杂志, 2014, 35(8): 943-948.
Yang XY, Wei BQ, Jin J, et al. Regional genotyping and the geographical distribution regarding Yersinia pestis isolates in China[J]. Chin J Epidemiol, 2014, 35(8): 943-948. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2014.08.015
[10]
Li YJ, Cui YJ, Cui BZ, et al. Features of variable number of tandem repeats in Yersinia pestis and the development of a hierarchical genotyping scheme[J]. PLoS One, 2013, 8(6): e66567. DOI:10.1371/journal.pone.0066567
[11]
Li YJ, Dai EH, Cui YJ, et al. Different region analysis for genotyping Yersinia pestis isolates from China[J]. PLoS One, 2008, 3(5): e2166. DOI:10.1371/journal.pone.0002166
[12]
杨瑞馥. 基因分析技术在鼠疫耶尔森菌中的应用[J]. 中华预防医学杂志, 2015, 49(1): 1-2.
Yang RF. Genotyping techniques in Yersinia pestis[J]. Chin J Prev Med, 2015, 49(1): 1-2. DOI:10.3760/cma.j.issn.0253-9624.2015.01.001
[13]
梁莹, 张志凯, 海荣, 等. 中国鼠疫耶尔森菌染色体结构特征的研究[J]. 中华地方病学杂志, 2014, 33(5): 479-484.
Liang Y, Zhang ZK, Hai R, et al. Chromosomal structural features of Yersinia pestis isolated from China[J]. Chin J Endemiol, 2014, 33(5): 479-484. DOI:10.3760/cma.j.issn.2095-4255.2014.05.003
[14]
朱俊杰, 王鹏, 李伟, 等. 云南省鼠疫菌株差异片段基因分型及其流行病学特征[J]. 中华地方病学杂志, 2013, 32(6): 599-601.
Zhu JJ, Wang P, Li W, et al. Genotyping of Yersinia pestis by different regions and its epidemiological characteristics in Yunnan province[J]. Chin J Endemiol, 2013, 32(6): 599-601. DOI:10.3760/cma.j.issn.2095-4255.2013.06.004
[15]
Morelli G, Song YJ, Mazzoni CJ, et al. Phylogenetic diversity and historical patterns of pandemic spread of Yersinia pestis[J]. Nat Genet, 2010, 42(12): 1140-1143. DOI:10.1038/ng.705
[16]
周冬生, 韩延平, 宋亚军, 等. 鼠疫耶尔森菌基因组进化与生态位适应研究[J]. 解放军医学杂志, 2004, 29(3): 204-210.
Zhou DS, Han YP, Song YJ, et al. DNA microarray analysis of genome dynamics in Yersinia pestis:insight into bacterial genome microevolution and niche adaptation[J]. Med J Chin People's Liberat Army, 2004, 29(3): 204-210. DOI:10.3321/j.issn:0577-7402.2004.03.005.issn:0577-7402.2004.03.005
[17]
Pourcel C, Salvignol G, Vergnaud G. CRISPR elements in Yersinia pestis acquire new repeats by preferential uptake of bacteriophage DNA, and provide additional tools for evolutionary studies[J]. Microbiology, 2005, 151(3): 653-663. DOI:10.1099/mic.0.27437-0