疾病监测  2015, Vol. 30 Issue (9): 789-791

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朱端昊, 冯长华, 路亮, 贺凤兰, 魏芳芳, 张健, 倪贤生
ZHU Duan-hao, FENG Chang-hua, LU Liang, HE Feng-lan, WEI Fang-fang, ZHANG Jian, NI Xian-sheng
人类免疫缺陷病毒HIV-1基因分型方法的初步构建
Preliminary establishment of HIV-1 subtyping assay
疾病监测, 2015, 30(9): 789-791
Disease Surveillance, 2015, 30(9): 789-791
10.3784/j.issn.1003-9961.2015.09.021

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收稿日期:2015-01-23
人类免疫缺陷病毒HIV-1基因分型方法的初步构建
朱端昊, 冯长华, 路亮, 贺凤兰, 魏芳芳, 张健, 倪贤生     
南昌市疾病预防控制中心, 江西 南昌 330038
摘要目的 建立一种合理、详尽、可行的HIV-1基因分型方法。 方法 采集南昌地区部分男性性接触人群(MSM)人类免疫缺陷病毒(HIV)感染者血浆,测量HIV病毒载量。提取其病毒RNA,设计引物并对HIV的Env区和Gag区进行反转录-聚合酶链反应。对扩增后的cDNA进行测序,比对序列并分别构建Env区和Gag区的分子进化树,确定样本的基因亚型,并分析p V3环氨基酸序列特征。 结果 本研究的3例样本中,1例样本的HIV病毒载量为43.9 copies/ml,其余2例均<20 copies/ml。3例样本经核酸序列分析,均鉴定为CRF01_AE亚型。 结论 此HIV-1基因分型方法合理、详细,可为国内HIV分子流行病学研究提供一些参考。
关键词艾滋病病毒    分子流行病学    基因分型    方法学    系统发育学    
Preliminary establishment of HIV-1 subtyping assay
ZHU Duan-hao, FENG Chang-hua, LU Liang, HE Feng-lan, WEI Fang-fang, ZHANG Jian, NI Xian-sheng     
Nanchang Center for Disease Control and Prevention, Nanchang 330038, Jiangxi, China
Abstract:Objective To establish a rational, detailed and feasible HIV-1 subtyping assay. Methods The viral loads of the plasma samples collected from men who have sex with men (MSM) infected with HIV in Nanchang were detected. The viral RNAs were extracted, and RT-PCR was performed in the Env and Gag region of these RNAs by using designed primers. The amplified cDNAs were sequenced. The sequences were aligned and the molecular phylogenetic trees of DNA in Env and Gag regions were constructed respectively. Based on these trees, the subtypes of HIV-1 were determined. The characteristics of amino acid sequences located in the V3-loop of Env region were analyzed. Results Among the three samples detected, the viral load of one sample was 43.9 copies/ml, and the viral load of other two were less than 20 copies/ml. All the strains from three samples belonged to CRF01_AE subtype. Conclusion The established HIV-1 subtyping assay was rational and detailed, which can provide some information for molecular epidemiological research in China.
Key words: Human immunodeficiency virus    Molecular epidemiology    Genome subtyping    Methodology    Phylogenetics    

自从1985年首次报道了人类免疫缺陷病毒(HIV)的完整核酸序列以来[1],研究人员获得了大量的HIV核酸序列信息,使HIV的分子流行病学研究迅速得到发展。根据各核酸序列的分子系统发育(molecular phylogenetics)分析,在全球范围内普遍流行的HIV-1型可以分为M(Main)、 N(Non-M-Non-O)、 O(Outlier)和P 4个组(group),其中最主要的M组可以分为A、 B、 C、 D、 F、 G、 H、 J和K亚型(subtype)[2]。该分类系统并不是静态的,近年来还报道了许多广泛流行的重组亚型(circulating recombinant forms,CRFs)。了解一个地区的HIV-1基因亚型分布可以更好地预测该地区病毒的进化和传播趋势。本研究旨在为我国HIV分子流行病学研究人员提出一种合理、详尽、可行的HIV-1基因分型方法。

1 材料和方法 1.1 引物的设计

在Los Alamos国家实验室的HIV核酸序列数据库中查找参考HIV核酸序列,在保守序列部分设计扩增的引物,并且确保扩增的序列位于Env基因的C2-V3区和Gag-Pol区。本实验设计的反转录-聚合酶链反应(RT-PCR)引物和nested PCR引物见表1

表1 本实验所设计的引物 Table 1 Primers for the experiment
Gag区引物Env区引物
RT-PCRGagF1:AAG GGG AAG TGA CAT AGC AGG(HXB2:1482-1503)
GagF2:ACT TTT GGG CCA TCC ATT CC(HXB2:2592-2611)
EnvF1:TTG TAC CCC AGC TGG TTT TGC G(HXB2:6875-6896)
EnvR1:GAC TCT TGC CTG GAG CTG TTT G(HXB2:7943-7964)
nested
PCR
GagF2:AGC ATT CTG GAC ATA AGA CAA GG(HXB2:1630-1652)
GagR2:CTT CCA ATT ATG TTG ACA GGT G(HXB2:2491-2512)
EnvF2:CAA TGC ACA CAT GGA ATC AAG CC(HXB2:6960-6982)
EnvR2:TGG CCT GTA CCG TCA GCG TTA TT(HXB2:7885-7907)
1.2 样本的采集

在南昌市男性性接触人群(MSM)监测哨点内,确证为HIV阳性的患者中选取3个样本,登记其基本信息及流行病学资料。抽取患者的抗凝静脉血5 ml,离心获得血浆-80 ℃保存备用。

1.3 血浆病毒载量的测定

取1 ml 的血浆用Cobas AmpliPrep/Cobas TaqMan仪器(Roche)测量HIV病毒载量。操作步骤按仪器和试剂的说明书进行。

1.4 提取核酸并进行RT-PCR

将300 μl的血浆采用Maxwell 16 viral total nucleic acid purification kit (Promega)提取HIV RNA,提取的病毒RNA采用TaKaRa公司的One-step RT PCR kit进行RT-PCR扩增。取5 μl的RNA按照试剂盒的反应说明书进行RT-PCR,其中扩增Gag区时样本的退火温度设为55 ℃,扩增Env区时样本的退火温度设为56 ℃。扩增产物直接用双蒸水稀释100倍保存于4 ℃冰箱待下一步巢式PCR用。

1.5 巢式PCR

取10 μl 100倍稀释的扩增产物按照TaKaRa公司的Ex Taq酶的反应说明书配置50 μl反应体系,按94 ℃ 30 s、55 ℃(Gag)或56 ℃(Env)30 s、72 ℃ 1 min设置反应程序,共进行30次循环。取3 μl PCR产物用2%琼脂糖凝胶进行电泳,105 V,20 min。

1.6 测序及基因分型

将PCR扩增之后的电泳呈明显单一条带的核酸送交Invitrogen公司进行测序,测序引物与nested PCR引物相同。获得的序列用Mega 6软件进行序列编辑、比对及遗传距离计算,构建出EnvGag基因片段的分子进化树,通过其判断该序列的基因亚型。

2 结果 2.1 血浆HIV病毒载量

3例患者的流行病学资料和HIV病毒载量见表2。3例患者都是通过男男高危性行为感染HIV,均接受过抗病毒治疗,其中MSM-1和MSM-3体内只有微量病毒(小于仪器的最低检测浓度20 copies/ml)。

表2 3例患者的流行病学情况及HIV病毒载量 Table 2 Viral loads and epidemiological characteristics of 3 HIV infected MSM
编号年龄
(岁)
感染时间
(月)
是否接受过
抗病毒治疗
病毒载量
(copies/ml)
MSM-12321<20
MSM-2373843.9
MSM-33690<20
2.2 目的片段的扩增

提取样本核酸后进行RT-PCR,获得cDNA片段,将其直接稀释后再进行巢式PCR,所获得的目的片段进行琼脂糖凝胶电泳后所得HIV的Gag片段与Env片段见图1

图1 MSM-1和MSM-2的Gag基因片段、MSM-3的 Env基因片段的电泳结果 Fig.1 Electrophoresis of Gag and Env region of MSM-1 and MSM-2
2.3 基因分型及系统发育分析

将上述扩增获得的基因片段进行测序,取得的核酸序列用Mega软件与Los Alamos实验室的HIV分型参考核酸序列进行剪接、比对[3],分别以O组HIV(GenBank序列号为AY 169804)和N组HIV(GenBank序列号为GQ 324958)为外部组(outgroup),采用最大似然性[JP2]方法生成分子进化树,见图2。根据图中的分类单元显示,MSM-1、MSM-2、MSM-3三个样本的HIV-1亚型均为CRF01_AE型。

图2GagEnv片段构建的分子系统发育树 Fig.2 Molecular phylogenetic trees of Gag and Env gene 注:采用最大似然性方法构建,节点上的数字表示600次bootstrap检验的百分值,仅显示大于60%的,研究样本以“△”标示。
2.4 MSM-3 Env区V3环氨基酸结构分析

HIV-1的Env基因的高度变异区V3环(V3 loop)是一个主要的病毒嗜性及抗体中和决定簇[4, 5]。笔者将MSM-3与B、01_AE亚型序列的V3环进行氨基酸比对(图3),发现其更接近于01_AE亚型,两者之间没有缺口(gaps),氨基酸匹配度为83%,相似度高达97%(相似度另外包括功能相似的氨基酸)。虽然V3环的顶端特征四肽G-P-G-R中,该样本的最后一个氨基酸由R(精氨酸)变异为Q(谷氨酰胺),但两者的功能是相似的。

图3 MSM-3 Env区V3环氨基酸比对 Fig.3 Alignment of the amino acids in v3 loop of MSM-3 Env region 注:括号里标注的是亚型,序列中的短横线代表缺口(gaps),特征四肽已用矩形框住。
3 讨论

目前我国各地的HIV分子流行病学的研究已有很多,但是大多数没有详细、可操作的完整实验流程,本研究可以为国内同行提供方法学上的一个详尽、有益的参考。在优化HIV基因分型方法中,最关键的是引物设计。目前一般是对HIV Env基因的C2-V3区进行测序,或者是Gag-Pol区。本研究将不同基因亚型的HIV基因进行比对,选定Env基因和Gag-Pol区中的保守部分作为设计引物的位点,从而增加对不同基因亚型HIV-1的扩增效率。本研究中的MSM-1和MSM-3样本的病毒载量均<20 copies/ml,但依然扩增出来明显的单一条带,说明该引物对于血浆中的HIV基因扩增灵敏度比较高。不同于以往实验中用2个基因片段来确定HIV-1亚型,本研究仅用1个基因片段,但有文献报道采用了GP41区1个小的基因片段(460 bp)依然可以获得很好的分型结果[6],笔者扩增出来的片段分别为879 bp(Gag)和882 bp (Env),而且本实验获得的分子进化树中样本与CRF01_AE有高相似度。本实验的样本来自江西省南昌市的MSM人群,在2012年的一项全国HIV-1分子流行病学调查中[7],江西省的CRF01_AE占绝大多数,与本次实验的结果相符。

图1中可见3个样本均扩增出明显的单一条带,而MSM-3的Env片段浓度更高,表明Env区段引物的特异性更好,而MSM-1和MSM-2的Gag片段的浓度对于成功测序也是足够的。本实验中MSM-3 Env基因区的V3环非常接近于CRF01_AE亚型的氨基酸序列。V3环的特征四肽G-P-G-R是抗体结合的关键位点,而MSM-3的特征四肽与CRF01_AE亚型在最后一个氨基酸位点虽然发生了变异,但两个氨基酸的功能类似,这些数据可以为进一步的结构学奠定基础。

本研究设计了一组有效的HIV-1基因分型引物,提供了一个合理、详尽的HIV-1基因分型操作步骤。

参考文献
[1] Wain-Hobson S, Sonigo P, Danos O, et al. Nucleotide sequence of the AIDS virus, LAV[J]. Cell,1985,40(1):9-17.
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[3] Leitner T, Korber B, Daniels M, et al. HIV-1 subtype and circulating recombinant form (CRF) reference sequences[M]//HIV Sequence Compendium 2005. Los Alamos, NM: Theoretical Biology and Biophysics Group, Los Alamos National Laboratory,2005:41-47, http://www.hiv.lanl.gov.
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[5] Zhang S, Xu GZ, Hu FJ, et al. Study on immunological status and viral subtype distribution of HIV-1 carriers in MSM, Ningbo[J]. Chinese Preventive Medicine,2010,11(4):354-357. (in Chinese) 张姝,许国章,胡逢蛟,等.宁波市男男同性恋人群中HIV-1感染者免疫状况和亚型分布研究[J]. 中华预防医学杂志,2010,11(4):354-357.
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[7] He X, Xing H, Ruan YH, et al. A comprehensive mapping of HIV-1 genotypes in various risk groups and regions across china based on a nationwide molecular epidemiologic survey[J]. PLoS One,2012,7(10):e47289.