扩展功能
文章信息
- 龙永艳, 倪贤生, 李端, 王瑞白, 陈海婴, 李娟, 阚飙
- LONG Yong-yan, NI Xian-sheng, LI Duan, WANG Rui-bai, CHEN Hai-ying, LI Juan, KAN Biao
- 食品从业人员肠道细菌CTX-M 型超广谱β-内酰胺酶的携带状况研究
- Carriage of CTX-M type extended-spectrum β-lactamase in intestinal bacteria isolated from people engaged in food processing
- 疾病监测, 2016, 31(5): 433-436
- Disease Surveillance, 2016, 31(5): 433-436
- 10.3784/j.issn.1003-9961.2016.05.018
-
文章历史
- 收稿日期:2016-01-12
2. 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所, 传染病预防控制国家重点实验室, 北京 102206
2. State Key Laboratory for Communicable Disease Control and Prevention, Institute for Communicable Disease Prevention and Control, Chinese Center for Disease Control and Prevention, Beijing 102206, China
细菌针对抗生素产生耐药,是当前临床治疗、传染病控制中面临的严峻挑战。携带超广谱β-内酰胺酶、产生抗β-内酰胺类药物的细菌(ESBL)是引起医院感染的常见原因。当前研究和监测主要关注感染患者的病原耐药性以及导致院内感染的临床相关细菌的耐药性。临床和养殖业中抗生素的广泛使用,已使耐药菌株异常增多并扩散,而且一些耐药性可通过耐药基因水平转移引起其他细菌的耐药,可能导致健康人群肠道中自然定居的非致病菌株带有耐药性,且可能引起新的耐药传播扩散。从事食品加工的人群具有更大的扩散耐药细菌的可能。社区健康人群是产超广谱β-内酰胺酶细菌的重要来源[1],因此研究健康人群正常定植细菌对β-内酰胺类抗生素的耐药状况有着重要的意义。
产生超广谱β-内酰胺酶是革兰阴性菌对β-内酰胺类抗生素耐药的最主要机制。CTX-M型超广谱β-内酰胺酶是一类能水解青霉素类、头孢菌素类及单环酰胺类抗菌药物的β-内酰胺酶,通常由质粒携带,可快速在不同种属细菌间进行传递[2-3]。近年来CTX-M型超广谱β-内酰胺酶是全球最流行的基因型,根据基因的同源性CTX-M分为五组,即G1、G2、G8、G9和G25基因型[4],显示了复杂的耐药机制。
我国对食品从业人员健康体检的管理要求,是保障食品安全的一个举措。该人群是否携带超广谱β-内酰胺酶细菌值得关注。本研究对2015年58月在江西省南昌市疾病预防控制中心(CDC)食品从业人员健康体检人群进行抽样检测,了解我国健康食品从业人员的肠道细菌CTX-M型超广谱β-内酰胺酶流行情况。
1 材料与方法 1.1 样本来源2015年5-8月收集自江西南昌市CDC食品从业人员健康体检肛拭样本140份(人/份)。主要选择从事厨师、洗菜工等餐饮行业人群,调查询问近3个月抗生素使用史,未使用抗生素者纳入研究群体。
1.2 方法 1.2.1 耐药菌株的分离与鉴定采集健康体检人群肛拭样本,置2 ml无菌生理盐水的试管中,采集的样本2 h内(划线或涂布)接种含4 μg/ml头孢曲松钠(购置中国药品生物制品检定所)营养琼脂平板(抗生素的浓度参照CLSI2013耐药折点浓度)、37 ℃18~24 h培养。挑取平板上耐药的3个形态大小不同的菌落进行革兰染色,阴性的菌落再次接种4 μg/ml头孢曲松钠的营养琼脂平板。分离的菌株(每个样本保留1株单克隆菌)用生物梅里埃API20E细菌鉴定试剂条进行种属鉴定。
1.2.2 DNA模板的制备挑取24 h内的纯培养物200 μl置入1.5 ml离心管内,100 ℃水浴10 min,12 000 r/min离心5 min,吸取上清。
1.2.3 PCR扩增CTX-M耐药基因CTX-M基因的引物序列、产物大小及退火温度参考文献[5]。PCR反应体系为50 μl,其中上下游引物 (10 pmol/μl)各2 μl,2×Taq Master Mix(康为世纪) 25 μl,DNA模板3 μl,去离子水调整到50 μl。反应条件: 94 ℃预变性5 min,94 ℃ 30 s,退火30 s(blaCTX-M-G9退火温度50 ℃,blaCTX-M-G2退火温度58 ℃,blaCTX-M-G1、blaCTX-M-G8和blaCTX-M-G25退火温度55 ℃),72 ℃延伸1 min,共32个循环,最后72 ℃延伸5 min。PCR仪为德国Sensoquest Labcycler。产物进行1.0% 琼脂糖凝胶电泳(成像系统为BioRad公司Gel DOC XR+)。阳性扩增产物进行测序。
1.2.4 序列分析扩增产物的序列结果用DNAStar 7.1生物软件进行分析,并和GenBank数据库中的blaCTX-M基因进行比对。
2 结果 2.1 年龄和性别共有140名研究对象纳入本次研究,其中男性49名,女性91名,年龄16~63岁,平均31.1岁。
2.2 耐药菌株分离结果140份肛拭标本接种含头孢曲松钠的抗生素平板,均有菌落生长。每份标本挑取耐药的3个形态大小不同的菌落进行革兰染色,将阴性的菌落再次接种含头孢曲松的营养琼脂平板。共有125份标本分离到革兰染色阴性菌。从业人员携带耐头孢曲松钠革兰染色阴性菌的阳性率为89.3%。其中革兰阴性菌分离率女性为91.2%(83/91),男性为85.7%(42/49),经χ2检验,差异无统计学意义(P=0.316),按年龄分两组,16~40岁革兰阴性菌分离率91.3%(95/104),41~70岁革兰阴性菌分离率83.3%(30/36),经χ2检验,差异无统计学意义(P=0.304)。从每份样品中随机挑取1株革兰染色阴性菌株进行种属鉴定,菌株构成比见表 1。
对125株耐头孢曲松的革兰阴性菌,进行CTX-M基因PCR检测,引物用于扩增五组CTX-M基因,除3株菌(2株弗劳地柠檬酸杆菌,1株大肠埃希菌)扩增阴性,其余菌株均扩增阳性,阳性检出率为97.6%(122/125)。其中,CTX-M-G1组检出率为38.4%(48/125),CTX-M-G9组检出率为56.0%(70/122),CTX-M-G1组和CTX-M-G9组同时检出率为3.2%(4/125)。CTX-M-G2、CTX-M-G25和CTX-M-G8组引物扩增均为阴性。对扩增产物进行测序,通过序列测定比对,得到CTX-M亚型及在各种属菌株中的分布,见表 2。
菌型 | CTX-M基因型 | 总计 | |||||||||||
M55 | M3 | M15 | M64 | M14 | M27 | M24 | M98 | M65 | M55+M14 | M55+M27 | M15+M14 | ||
大肠埃希菌 | 15 | 4 | 18 | 1 | 38 | 19 | 2 | 1 | 5 | 2 | 1 | 1 | 107 |
弗格森埃希菌 | 1 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 |
肺炎克雷伯菌 | 1 | 4 | 4 | 0 | 1 | 1 | 0 | 0 | 1 | 0 | 0 | 0 | 12 |
伤口埃希菌 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 |
奇异变形杆菌 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 | 0 | 0 | 0 | 1 |
合 计 | 17 | 8 | 22 | 1 | 39 | 20 | 3 | 1 | 7 | 2 | 1 | 1 | 122 |
本研究对食品从业人员健康体检(检测时无腹泻,且3个月内未使用抗生素)粪便标本进行了耐头孢曲松钠药物革兰染色阴性细菌的培养分离、并进一步鉴定其CTX-M型ESBLs基因。所有检测标本均发现耐头孢曲松的菌落生长,与采样人群的性别、年龄无关,其中革兰阴性耐药菌分离率与性别、年龄的差异无统计学意义。经随机挑选菌落进行染色鉴定,发现89.3%的食品从业人员携带耐头孢曲松的革兰阴性菌,这些菌中绝大多数携带CTX-M型ESBLs的基因,只有2株弗劳地柠檬酸杆菌、1株大肠埃希菌未检测到CTX-M型ESBLs基因。此3株菌株有可能携带其他型ESBLs基因,有待进一步研究。
以往针对患者和致病细菌的产超广谱β-内酰胺酶进行监测和研究,但针对正常人群在无感染和表现疾病时是否仍携带抗β-内酰胺药物的定植细菌研究较少。对于健康体检人群的携带耐药菌株的监测,大多是先培养获得菌株后,再对分离株进行耐药状况和相应基因的检测[6-7]。本研究将粪便标本直接经含有头孢曲松的营养琼脂培养基进行耐药菌株的筛检,主要观察非腹泻人群中携带耐头孢类革兰阴性菌及其CTX-M型ESBLs基因的状况。监测结果显示调查人群非腹泻状态下依然携带高水平耐头孢类药物菌株。在另外一项针对健康人群携带CTX-M β-内酰胺酶的大肠埃希菌研究中[8],也发现有50.5%的携带率。
本研究中对加有抗生素平板上生长的菌落进行了随机挑选,对菌落携带CTX-M基因进行了PCR筛查和测序分型。发现携带CTX-M型ESBLs基因的肠杆菌在调查人群中携带率非常高,其亚型主要为CTX-M-G9和CTX-M-G1组,而且发现少量菌株中同时检出CTX-M-G1组和CTX-M-G9组酶。进一步对不同CTX-M基因型的分布检测,基因型别较多,共检测到9种基因型,而且在4株菌中分别检测到2种基因型共存。提示健康人群中非致病肠杆菌携带复杂的CTX-M耐药基因。有报道临床来源大肠埃希菌的CTX-M-15和CTX-M-14检出率最高[9],另一项监测发现临床分离的志贺菌中检出的都为CTX-M-14[10],另外,从致病菌的传播链上,有报道从健康家禽和家畜中分离的大肠埃希菌CTX-M-14和CTX-M-55检出率最高[11]。临床检出菌和动物来源菌中有着类似的CTX-M流行亚型,提示从养殖、健康人群和临床病例群体中,应存在CTX-M耐药基因的传递。
CTX-M型ESBLs常位于质粒和转座子上,易在不同宿主间传播[11]。且常与sul、qnr、armA等其他类型耐药基因聚集成簇,介导对氨基糖苷类、喹诺酮类和磺胺类等抗菌药物耐药[2-3]。有研究发现人和零售鸡肉类食品携带相同类型的ESBLs耐药基因[3],并显示食品加工人员和肉类食品所携带的ESBLs基因可以通过食物中的微生物造成扩散[12]。耐药菌可通过食品加工环节的污染造成耐药菌扩散,一方面可因食物加工过程中获得耐药菌,另一方面可以造成耐药菌的传播。本研究选择健康体检人群为食品从业人员,主要为厨师、洗菜工等,他们与家禽、家畜等肉类和蔬菜接触频繁,相对容易获得产ESBLs的抗性菌株,更易传播抗性菌株。因此,监测食品从业人员抗生素耐药菌株、尤其是肠道非致病的菌株,在食品安全管理以及防止耐药菌株扩散等方面,有着积极的意义。
本次研究使用的普通琼脂平板可增殖多种细菌。主要选择加入头孢曲松的琼脂平板分离耐药菌株,并随机挑取了1株革兰阴性耐药菌(鉴定均为肠杆菌)。健康者肠道中可能存在多种耐CTX-M型ESBLs的细菌。在以后的研究中将进一步利用不同培养鉴定方法,从挑选细菌的数量和细菌种类的广度上对标本耐药菌进行更详细的筛检。
[1] | Li X, Shabir S, Bodah T, et al. Regional survey of CTX-M-type extended-spectrum β-lactamases among Enterobacteriaceae reveals marked heterogeneity in the distribution of the ST131 clone[J]. J Antimicrob Chemother, 2011, 66 (3) : 505–511 . |
[2] | Brolund A. Overview of ESBL-producing Enterobacteriaceae from a Nordic perspective[J]. Infect Ecol Epidemiol, 2014 : . |
[3] | Overdevest I, WillemsenI, RijnsburgerM, et al. Extended-spectrum β-lactamase genes of Escherichia coli in chicken meat and humans, the Netherlands[J]. Emerg Infect Dis, 2011, 17 (7) : 1216–1222 . |
[4] | Ghafourian S, Sadeghifard N, Soheili S, et al. Extended spectrum beta-lactamases: definition, classification and epidemiology[J]. Curr Issues Mol Biol, 2014 : 11–22 . |
[5] | Meng Q, Zhao AL, Bai XN, et al. Analysis of antimicrobial resistances and ESBLs genotypes of Shiga toxin-producing Escherichia coli isolates from pigs[J]. Journal of Pathogen Biology, 2014, 9 (1) : 23–26 .(in Chinese) 孟琼, 赵爱兰, 白向宁, 等. 猪源产志贺毒素大肠埃希菌耐药性及超广谱β-内酰胺酶基因型分析[J]. 中国病原生物学杂志,2014,9 (1) :23–26. |
[6] | Cai MS, Ren Y, Sun HJ, et al. Detection and the drug resistance analysis of Escherichia coli producing ESBLs in public place personnel[J]. Chinese Journal of Health Laboratory Technology, 2015, 25 (2) : 284–285 .(in Chinese) 蔡妙森, 任燕, 孙华杰, 等. 公共场所从业人员大肠埃希菌产超广谱β-内酰胺酶检测及耐药性分析[J]. 中国卫生检验杂志,2015,25 (2) :284–285. |
[7] | Heng X, Zhang XB, Ma Y, et al. Changes of antimicrobialresistances and producing ESBLs of Escherichia coli isolates from healthy humans in Kaifeng[J]. Clinical Focus, 2013, 28 (7) : 806–808 .(in Chinese) 桓新, 张效本, 马颖, 等. 开封市健康人群大肠埃希菌多重耐药性变迁及产超广谱β-内酰胺酶分析[J]. 临床荟萃,2013,28 (7) :806–808. |
[8] | Li B, Sun JY, Liu QZ, et al. High prevalence of CTX-M β-lactamases in faecal Escherichia coli strains from healthy humans in Fuzhou, China[J]. Scand J Infect Dis, 2011, 43 (3) : 170–174 . |
[9] | Cao XL, Cavaco LM, Lyu Y, et al. Molecular characterization and antimicrobial susceptibilitytesting of Escherichia coli isolates from patients with urinary tract infections in 20 Chinese hospitals[J]. J Clin Microbiol, 2011, 49 (7) : 2496–2501 . |
[10] | Miao Y, Liu J, Wang LP, et al. Gene analysis for the CTX-M-9 group extended spectrum beta-lactamases in clinicalisolates of Shigella[J]. Chinese Journal of Health Laboratory Technology, 2013, 23 (3) : 670–672 .(in Chinese) 苗元, 刘静, 王利萍, 等. 临床分离志贺菌中CTX-M-9型超广谱β-内酰胺酶基因分析[J]. 中国卫生检验杂志,2013,23 (3) :670–672. |
[11] | Zheng HQ, Zeng ZL, Chen S, et al. Prevalence and characterisation of CTX-M β-lactamases amongst Escherichia coli isolates from healthy food animals in China[J]. Int J Antimicrob, 2012, 39 (4) : 305–310 . |
[12] | Lavilla S, González-López JJ, Miró E, et al. Dissemination of extended-spectrum beta-lactamase-producing bacteria: the food-borne outbreak lesson[J]. J Antimicrob Chemother, 2008, 61 (6) : 1244–1251 . |